สอบถามรายละเอียดเพิ่มเติมbg

การผสมผสานมุ้งกันยุงที่มีอายุการใช้งานยาวนานกับสารกำจัดตัวอ่อนของเชื้อ Bacillus thuringiensis เป็นแนวทางบูรณาการที่น่ามีแนวโน้มในการป้องกันการแพร่เชื้อมาลาเรียทางตอนเหนือของประเทศโกตดิวัวร์ Malaria Journal |

การลดลงเมื่อเร็วๆ นี้ของภาระโรคมาลาเรียในประเทศโกตดิวัวร์ส่วนใหญ่เป็นผลมาจากการใช้ตาข่ายฆ่าแมลง (LIN) ที่ติดทนนานอย่างไรก็ตาม ความคืบหน้านี้ถูกคุกคามจากการดื้อยาฆ่าแมลง การเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมของประชากรยุงก้นปล่อง แกมเบีย และการแพร่กระจายของเชื้อมาลาเรียที่ตกค้าง ทำให้จำเป็นต้องมีเครื่องมือเพิ่มเติมดังนั้น จุดมุ่งหมายของการศึกษานี้คือเพื่อประเมินประสิทธิผลของการใช้ LLIN และ Bacillus thuringiensis (Bti) ร่วมกัน และเปรียบเทียบกับ LLIN
การศึกษานี้ดำเนินการตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ในกลุ่มวิจัย 2 กลุ่ม (กลุ่ม LLIN + Bti และกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว) ในเขตสุขภาพ Korhogo ทางตอนเหนือของประเทศโกตดิวัวร์ในกลุ่ม LLIN + Bti แหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องได้รับการรักษาด้วย Bti ทุกสองสัปดาห์ นอกเหนือจาก LLINรวบรวมยุงตัวอ่อนและยุงตัวเต็มวัยและจำแนกลักษณะทางสัณฐานวิทยาตามสกุลและสปีชีส์โดยใช้วิธีมาตรฐานสมาชิก แอน.สารเชิงซ้อนแกมเบียถูกกำหนดโดยใช้เทคโนโลยีปฏิกิริยาลูกโซ่โพลีเมอเรสการติดเชื้อพลาสโมเดียมแอนประเมินอุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียในแกมเบียและประชากรในท้องถิ่นด้วย
โดยรวมแล้ว ยุงก้นปล่อง spp.ความหนาแน่นของตัวอ่อนต่ำกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว 0.61 [95% CI 0.41–0.81] ตัวอ่อน/การดำน้ำ (l/การดำน้ำ) 3.97 [95% CI 3.56–4 .38] ลิตร/การดำน้ำ (RR = 6.50; 95% CI 5.81–7.29 P < 0.001)ความเร็วกัดโดยรวมของอันอุบัติการณ์ของการถูก S. gambiae กัดคือ 0.59 [95% CI 0.43–0.75] ต่อคน/คืนในกลุ่มที่ได้รับ LLIN + Bti เพียงอย่างเดียว เทียบกับ 2.97 [95% CI 2.02–393] กัดต่อคน/คืนในกลุ่มเฉพาะ LLIN เท่านั้น (P < 0.001)ยุงก้นปล่อง gambiae sl ถูกระบุโดยหลักว่าเป็นยุงก้นปล่องยุงก้นปล่อง gambiae (ss) (95.1%; n = 293) ตามด้วยยุงก้นปล่อง gambiae (4.9%; n = 15)ดัชนีเลือดมนุษย์ในพื้นที่ศึกษาคือ 80.5% (n = 389)EIR สำหรับกลุ่ม LLIN + Bti อยู่ที่ 1.36 การติดเชื้อกัดต่อคนต่อปี (ib/p/y) ในขณะที่ EIR สำหรับกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวคือ 47.71 ib/p/yอุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียลดลงอย่างรวดเร็วจาก 291.8‰ (n = 765) เป็น 111.4‰ (n = 292) ในกลุ่ม LLIN + Bti (P ​​< 0.001)
การรวมกันของ LLIN และ Bti ช่วยลดอุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียได้อย่างมีนัยสำคัญการรวมกันของ LLIN และ Bti อาจเป็นแนวทางบูรณาการที่มีแนวโน้มสำหรับการควบคุม An ที่มีประสิทธิผลแกมเบียไม่มีโรคมาลาเรีย
แม้จะมีความก้าวหน้าในการควบคุมโรคมาลาเรียในช่วงไม่กี่ทศวรรษที่ผ่านมา แต่ภาระของโรคมาลาเรียยังคงเป็นปัญหาสำคัญในแอฟริกาตอนใต้ทะเลทรายซาฮารา [1]องค์การอนามัยโลก (WHO) รายงานเมื่อเร็วๆ นี้ว่ามีผู้ป่วยโรคมาลาเรีย 249 ล้านราย และมีผู้เสียชีวิตจากโรคมาลาเรียประมาณ 608,000 รายทั่วโลกในปี พ.ศ. 2566 [2]ภูมิภาคแอฟริกาของ WHO คิดเป็น 95% ของผู้ป่วยโรคมาลาเรียทั่วโลก และ 96% ของการเสียชีวิตด้วยโรคมาลาเรีย โดยหญิงตั้งครรภ์และเด็กอายุต่ำกว่า 5 ปีได้รับผลกระทบมากที่สุด [2, 3]
ตาข่ายฆ่าแมลงที่มีอายุการใช้งานยาวนาน (LLIN) และการฉีดพ่นสารตกค้างในร่ม (IRS) มีบทบาทสำคัญในการลดภาระของโรคมาลาเรียในแอฟริกา [4]การขยายตัวของเครื่องมือควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรียเหล่านี้ส่งผลให้อุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียลดลง 37% และอัตราการเสียชีวิตลดลง 60% ระหว่างปี 2543 ถึง 2558 [5]อย่างไรก็ตาม แนวโน้มที่สังเกตมาตั้งแต่ปี 2558 ได้หยุดชะงักลงอย่างน่าตกใจหรือแม้กระทั่งเร่งตัวขึ้น โดยการเสียชีวิตด้วยโรคมาลาเรียยังคงสูงจนไม่อาจยอมรับได้ โดยเฉพาะในแอฟริกาตอนใต้ทะเลทรายซาฮารา [3]การศึกษาหลายชิ้นได้ระบุการเกิดขึ้นและการแพร่กระจายของการดื้อยาในยุงก้นปล่องที่เป็นพาหะนำโรคมาลาเรียที่สำคัญต่อยาฆ่าแมลงที่ใช้ในด้านสาธารณสุขซึ่งเป็นอุปสรรคต่อประสิทธิผลในอนาคตของ LLIN และ IRS [6,7,8]นอกจากนี้ การเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมการกัดของแมลงพาหะกลางแจ้งและช่วงเช้าตรู่ทำให้เกิดการแพร่เชื้อมาลาเรียที่ตกค้าง และเป็นข้อกังวลที่เพิ่มมากขึ้น [ 9 , 10 ]ข้อจำกัดของ LLIN และ IRS ในการควบคุมพาหะที่รับผิดชอบในการแพร่เชื้อที่ตกค้างถือเป็นข้อจำกัดที่สำคัญของความพยายามในการกำจัดโรคมาลาเรียในปัจจุบัน [11]นอกจากนี้ การคงอยู่ของโรคมาลาเรียอธิบายได้จากสภาพภูมิอากาศและกิจกรรมของมนุษย์ ซึ่งมีส่วนทำให้เกิดแหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อน [12]
การจัดการแหล่งตัวอ่อน (LSM) เป็นแนวทางที่ใช้พื้นที่เพาะพันธุ์เพื่อควบคุมแมลงพาหะ โดยมีจุดมุ่งหมายเพื่อลดจำนวนแหล่งเพาะพันธุ์และจำนวนลูกน้ำยุงและดักแด้ที่อยู่ภายในพวกมัน [13]การศึกษาหลายชิ้นแนะนำให้ใช้ LSM เพื่อเป็นกลยุทธ์บูรณาการเพิ่มเติมสำหรับการควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรีย [14, 15]ในความเป็นจริง ประสิทธิผลของ LSM ให้ประโยชน์สองประการต่อการถูกพาหะนำโรคมาลาเรียกัดทั้งในบ้านและนอกบ้าน [4]นอกจากนี้ การควบคุมพาหะนำโรคด้วย LSM ที่มีสารกำจัดตัวอ่อน เช่น Bacillus thuringiensis israelensis (Bti) สามารถขยายขอบเขตของตัวเลือกการควบคุมโรคมาลาเรียได้ในอดีต LSM มีบทบาทสำคัญในการควบคุมโรคมาลาเรียที่ประสบความสำเร็จในสหรัฐอเมริกา บราซิล อียิปต์ แอลจีเรีย ลิเบีย โมร็อกโก ตูนิเซีย และแซมเบีย [16,17,18]แม้ว่า LSM จะมีบทบาทสำคัญในการจัดการศัตรูพืชแบบผสมผสานในบางประเทศที่กำจัดโรคมาลาเรียให้หมดไป แต่ LSM ยังไม่ได้บูรณาการอย่างกว้างขวางเข้ากับนโยบายและแนวปฏิบัติในการควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรียในแอฟริกา และมีการใช้เฉพาะในโครงการควบคุมพาหะในบางประเทศทางตอนใต้ทะเลทรายซาฮาราเท่านั้นประเทศ [14,15,16,17,18,19]เหตุผลประการหนึ่งคือความเชื่อที่แพร่หลายว่าแหล่งเพาะพันธุ์มีจำนวนมากเกินไปและหายาก ทำให้ LSM มีราคาแพงมากในการดำเนินการ [4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 13, 14]ดังนั้น องค์การอนามัยโลกได้แนะนำมานานหลายทศวรรษว่าทรัพยากรที่ระดมเพื่อการควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรียควรมุ่งเน้นไปที่ LLIN และ IRS [20, 21]จนกระทั่งปี 2012 องค์การอนามัยโลกแนะนำให้รวม LSM โดยเฉพาะอย่างยิ่งการแทรกแซง Bti เพื่อเป็นส่วนเสริมของ LLIN และ IRS ในบางพื้นที่ในอนุภูมิภาคทะเลทรายซาฮาราแอฟริกา [20]เนื่องจาก WHO ได้ให้คำแนะนำนี้ มีการศึกษานำร่องหลายครั้งเกี่ยวกับความเป็นไปได้ ประสิทธิผล และราคาของสารฆ่าแมลงทางชีวภาพในอนุภูมิภาคทะเลทรายซาฮาราของแอฟริกา ซึ่งแสดงให้เห็นถึงประสิทธิผลของ LSM ในการลดความหนาแน่นของยุงก้นปล่องและประสิทธิภาพการแพร่กระจายของเชื้อมาลาเรียในแง่ของ [22, 23]-, 24].
โกตดิวัวร์เป็นหนึ่งใน 15 ประเทศที่มีภาระโรคมาลาเรียมากที่สุดในโลก [25]ความชุกของโรคมาลาเรียในโกตดิวัวร์คิดเป็นร้อยละ 3.0 ของภาระโรคมาลาเรียทั่วโลก โดยมีอุบัติการณ์และจำนวนผู้ป่วยโดยประมาณตั้งแต่ 300 ถึงมากกว่า 500 รายต่อประชากร 1,000 คน [25]แม้จะมีฤดูแล้งที่ยาวนานตั้งแต่เดือนพฤศจิกายนถึงเดือนพฤษภาคม แต่โรคมาลาเรียก็แพร่กระจายได้ตลอดทั้งปีในพื้นที่สะวันนาทางตอนเหนือของประเทศ [26]การแพร่เชื้อมาลาเรียในภูมิภาคนี้สัมพันธ์กับการมีอยู่ของพาหะพลาสโมเดียม ฟัลซิพารัมที่ไม่มีอาการจำนวนมาก [27]ในภูมิภาคนี้ พาหะนำโรคมาลาเรียที่พบบ่อยที่สุดคือ Anopheles gambiae (SL)ความปลอดภัยในท้องถิ่นยุงก้นปล่อง gambiae ประกอบด้วยยุงก้นปล่อง gambiae (SS) เป็นหลัก ซึ่งมีความทนทานต่อยาฆ่าแมลงสูง ดังนั้นจึงมีความเสี่ยงสูงต่อการแพร่กระจายของเชื้อมาลาเรียที่ตกค้าง [26]การใช้ LLIN อาจมีผลกระทบอย่างจำกัดในการลดการแพร่กระจายของเชื้อมาลาเรียเนื่องจากการดื้อยาฆ่าแมลงของพาหะในท้องถิ่น และดังนั้นจึงยังคงเป็นข้อกังวลหลักการศึกษานำร่องโดยใช้ Bti หรือ LLIN แสดงให้เห็นประสิทธิภาพในการลดความหนาแน่นของยุงพาหะในโกตดิวัวร์ตอนเหนืออย่างไรก็ตาม ไม่มีการศึกษาก่อนหน้านี้ที่ประเมินผลของการใช้ Bti ซ้ำร่วมกับ LLIN ต่อการแพร่เชื้อมาลาเรียและอุบัติการณ์ของมาลาเรียในภูมิภาคนี้ดังนั้น การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินผลของการใช้ LLIN และ Bti ร่วมกันต่อการแพร่เชื้อมาลาเรีย โดยการเปรียบเทียบกลุ่ม LLIN + Bti กับกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวในหมู่บ้าน 4 แห่งในภาคเหนือของโกตดิวัวร์มีการตั้งสมมติฐานว่าการใช้ LSM ที่ใช้ Bti ร่วมกับ LLIN จะเพิ่มมูลค่าโดยการลดความหนาแน่นของยุงมาลาเรียเพิ่มเติมเมื่อเปรียบเทียบกับ LLIN เพียงอย่างเดียววิธีการบูรณาการนี้ โดยกำหนดเป้าหมายไปที่ยุงก้นปล่องที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะที่มีเชื้อ Bti และยุงก้นปล่องสำหรับผู้ใหญ่ที่มีสาร LLIN อาจมีความสำคัญอย่างยิ่งในการลดการแพร่กระจายของเชื้อมาลาเรียในพื้นที่ที่มีการแพร่ระบาดของโรคมาลาเรียในระดับสูง เช่น หมู่บ้านทางตอนเหนือของประเทศโกตดิวัวร์ดังนั้น ผลการศึกษานี้อาจช่วยตัดสินใจว่าจะรวม LSM ไว้ในโครงการควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรีย (NMCPs) ในประเทศที่เป็นถิ่นทุรกันดารในแถบทะเลทรายซาฮาราหรือไม่
การศึกษาครั้งนี้ดำเนินการในหมู่บ้านสี่แห่งของแผนก Napieldougou (หรือที่รู้จักในชื่อ Napier) ในเขตสุขาภิบาล Korhogo ทางตอนเหนือของประเทศโกตดิวัวร์ (รูปที่ 1)หมู่บ้านที่กำลังศึกษา: Kakologo (9° 14′ 2″ N, 5° 35′ 22″ E), Kolekakha (9° 17′ 24″ N, 5° 31′ 00″ E .), Lofinekaha (9° 17′ 31 ″)) 5° 36′ 24″ N) และนัมบาติอูร์กาฮา (9° 18′ 36″ N, 5° 31′ 22″ E)ประชากรของ Napierledougou ในปี 2564 คาดว่าจะมีประชากร 31,000 คน และจังหวัดนี้ประกอบด้วยหมู่บ้าน 53 แห่งพร้อมศูนย์สุขภาพ 2 แห่ง [28]ในจังหวัด Napyeledougou ซึ่งโรคมาลาเรียเป็นสาเหตุหลักของการไปพบแพทย์ การเข้ารับการรักษาในโรงพยาบาล และการเสียชีวิต มีเพียง LLIN เท่านั้นที่ใช้ควบคุมพาหะของยุงก้นปล่อง [29]หมู่บ้านทั้งสี่ในทั้งสองกลุ่มการศึกษาได้รับการบริการโดยศูนย์สุขภาพแห่งเดียวกัน ซึ่งมีการทบทวนบันทึกทางคลินิกของผู้ป่วยโรคมาลาเรียในการศึกษานี้
แผนที่ของประเทศโกตดิวัวร์แสดงพื้นที่ศึกษา(แหล่งที่มาของแผนที่และซอฟต์แวร์: ข้อมูล GADM และ ArcMap 10.6.1. ตาข่ายฆ่าแมลงที่มีอายุการใช้งานยาวนานของ LLIN, Bti Bacillus thuringiensis israelensis
ความชุกของโรคมาลาเรียในกลุ่มประชากรเป้าหมายของ Napier Health Center สูงถึง 82.0% (ผู้ป่วย 2,038 ราย) (ข้อมูลก่อน Bti)ในหมู่บ้านทั้งสี่ ครัวเรือนใช้เฉพาะ PermaNet® 2.0 LLIN ซึ่งจัดจำหน่ายโดย Ivorian NMCP ในปี 2017 โดยมีความครอบคลุม >80% [25, 26, 27, 28, 30]หมู่บ้านเหล่านี้อยู่ในภูมิภาค Korhogo ซึ่งทำหน้าที่เป็นจุดชมวิวสำหรับสภาทหารแห่งชาติไอวอรีโคสต์ และสามารถเข้าถึงได้ตลอดทั้งปีแต่ละหมู่บ้านในสี่หมู่บ้านมีอย่างน้อย 100 ครัวเรือนและมีประชากรประมาณเดียวกัน และตามทะเบียนสุขภาพ (เอกสารการทำงานของกระทรวงสาธารณสุขไอวอรี) มีรายงานผู้ป่วยโรคมาลาเรียหลายรายในแต่ละปีมาลาเรียมีสาเหตุหลักมาจากพลาสโมเดียม ฟัลซิพารัม (P. falciparum) และแพร่เชื้อสู่มนุษย์โดยพลาสโมเดียมแกมเบียยังติดต่อโดยยุงก้นปล่องและยุงก้นปล่องในภูมิภาค [28]คอมเพล็กซ์ท้องถิ่นอันแกมเบียประกอบด้วยยุงก้นปล่องเป็นหลักgambiae ss มีความถี่สูงของการกลายพันธุ์ของ kdr (ช่วงความถี่: 90.70–100%) และความถี่ปานกลางของอัลลีล ace-1 (ช่วงความถี่: 55.56–95%) [29]
ปริมาณน้ำฝนและอุณหภูมิเฉลี่ยต่อปีอยู่ในช่วง 1,200 ถึง 1,400 มม. และ 21 ถึง 35 °C ตามลำดับ และความชื้นสัมพัทธ์ (RH) อยู่ที่ประมาณ 58%พื้นที่ศึกษานี้มีสภาพภูมิอากาศแบบซูดาน โดยมีฤดูแล้ง 6 เดือน (พฤศจิกายนถึงเมษายน) และฤดูฝน 6 ​​เดือน (พฤษภาคม-ตุลาคม)ภูมิภาคนี้กำลังเผชิญกับผลกระทบบางประการจากการเปลี่ยนแปลงสภาพภูมิอากาศ เช่น การสูญเสียพืชพรรณและฤดูแล้งที่ยาวนานขึ้น โดยมีลักษณะเฉพาะคือการทำให้แหล่งน้ำแห้ง (ที่ราบลุ่ม นาข้าว สระน้ำ แอ่งน้ำ) ที่สามารถทำหน้าที่เป็นที่อยู่อาศัยของลูกน้ำยุงก้นปล่อง .ยุง[26].
การศึกษาดำเนินการในกลุ่ม LLIN + Bti ซึ่งเป็นตัวแทนโดยหมู่บ้าน Kakologo และ Nambatiurkaha และในกลุ่ม LLIN เดียวซึ่งเป็นตัวแทนโดยหมู่บ้าน Kolekaha และ Lofinekahaในช่วงเวลาของการศึกษานี้ ผู้คนในหมู่บ้านทั้งหมดเหล่านี้ใช้ PermaNet® 2.0 LLIN เท่านั้น
ประสิทธิผลของ LLIN (PermaNet 2.0) ร่วมกับ Bti ต่อยุงก้นปล่องและการแพร่เชื้อมาลาเรียได้รับการประเมินในการทดลองแบบสุ่มที่มีกลุ่มควบคุม (RCT) ด้วยสองกลุ่มการศึกษา: กลุ่ม LLIN + Bti (กลุ่มการรักษา) และกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (กลุ่มควบคุม ).แขนเสื้อ LLIN + Bti แสดงโดย Kakologo และ Nambatiourkaha ในขณะที่ Kolékaha และ Lofinékaha ได้รับการออกแบบให้เป็นไหล่ของ LLIN เท่านั้นในหมู่บ้านทั้งสี่แห่ง ผู้อยู่อาศัยในท้องถิ่นกำลังใช้ LLIN PermaNet® 2.0 ที่ได้รับจาก Ivory Coast NMCP ในปี 2017 สันนิษฐานว่าเงื่อนไขในการใช้ PermaNet® 2.0 จะเหมือนกันในหมู่บ้านต่างๆ เนื่องจากพวกเขาได้รับเครือข่ายในลักษณะเดียวกัน-ในกลุ่ม LLIN + Bti แหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องได้รับการรักษาด้วย Bti ทุกสองสัปดาห์ นอกเหนือจาก LLIN ที่ประชากรใช้อยู่แล้วแหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนภายในหมู่บ้านและภายในรัศมี 2 กม. จากศูนย์กลางของแต่ละหมู่บ้านได้รับการปฏิบัติตามคำแนะนำขององค์การอนามัยโลกและ NMCP ของประเทศโกตดิวัวร์ [31]ในทางตรงกันข้าม กลุ่มที่ใช้ LLIN อย่างเดียวไม่ได้รับการรักษาด้วย Bti สำหรับตัวอ่อนลูกน้ำในระหว่างระยะเวลาการศึกษา
ใช้รูปแบบเม็ดที่กระจายน้ำได้ของ Bti (Vectobac WG, 37.4% wt; หมายเลขล็อต 88–916-PG; 3000 หน่วยความเป็นพิษระหว่างประเทศ IU/mg; Valent BioScience Corp, USA) ถูกนำมาใช้ในขนาด 0.5 มก./ลิตร-ใช้เครื่องพ่นแบบสะพายหลังขนาด 16 ลิตรและปืนฉีดไฟเบอร์กลาสพร้อมด้ามจับและหัวฉีดแบบปรับได้ที่มีอัตราการไหล 52 มล. ต่อวินาที (3.1 ลิตร/นาที)ในการเตรียมเครื่องพ่นฝอยละอองที่มีน้ำ 10 ลิตร ปริมาณ Bti ที่เจือจางในสารแขวนลอยคือ 0.5 มก./ลิตร × 10 ลิตร = 5 มก.ตัวอย่างเช่น สำหรับพื้นที่ที่มีการออกแบบการไหลของน้ำ 10 ลิตร โดยใช้เครื่องพ่นขนาด 10 ลิตรเพื่อบำบัดน้ำหนึ่งปริมาตร ปริมาณ Bti ที่ต้องเจือจางคือ 0.5 มก./ลิตร × 20 ลิตร = 10 มก.วัด Bti 10 มก. ในสนามโดยใช้สเกลอิเล็กทรอนิกส์ใช้ไม้พายเตรียมสารละลายโดยผสม Bti ปริมาณนี้ลงในถังตวงขนาด 10 ลิตรปริมาณนี้ถูกเลือกหลังจากการทดลองภาคสนามเกี่ยวกับประสิทธิผลของ Bti กับระยะต่างๆ ของยุงก้นปล่องและคูเล็กซ์ เอสพีพี.ในสภาพธรรมชาติในพื้นที่ที่แตกต่างแต่คล้ายคลึงกับพื้นที่การวิจัยสมัยใหม่ [32]อัตราการใช้สารแขวนลอยตัวอ่อนและระยะเวลาการใช้ในแต่ละพื้นที่ผสมพันธุ์คำนวณจากปริมาณน้ำโดยประมาณที่บริเวณผสมพันธุ์ [33]ใช้ Bti โดยใช้เครื่องพ่นสารเคมีแบบมือที่ปรับเทียบแล้วเครื่องพ่นยาจะได้รับการปรับเทียบและทดสอบระหว่างการออกกำลังกายแต่ละครั้งและในพื้นที่ต่างๆ เพื่อให้แน่ใจว่าได้รับ Bti ในปริมาณที่ถูกต้อง
เพื่อหาเวลาที่ดีที่สุดในการรักษาสถานที่เพาะพันธุ์ตัวอ่อน ทีมงานจึงระบุการฉีดพ่นหน้าต่างช่วงสเปรย์คือระยะเวลาที่ใช้ผลิตภัณฑ์เพื่อให้ได้ประสิทธิภาพสูงสุด: ในการศึกษานี้ ช่วงสเปรย์อยู่ระหว่าง 12 ชั่วโมงถึง 2 สัปดาห์ ขึ้นอยู่กับความคงอยู่ของ Btiเห็นได้ชัดว่าการดูดซึม Bti โดยตัวอ่อนในบริเวณผสมพันธุ์ต้องใช้เวลาตั้งแต่ 7.00 น. ถึง 18.00 น.ด้วยวิธีนี้ จึงสามารถหลีกเลี่ยงช่วงที่ฝนตกหนักได้ เมื่อฝนหมายถึงการหยุดฉีดพ่นและเริ่มต้นใหม่ในวันถัดไปหากสภาพอากาศเอื้ออำนวยวันที่ฉีดพ่นและวันที่และเวลาที่แน่นอนขึ้นอยู่กับสภาพอากาศที่สังเกตได้ในการสอบเทียบเครื่องพ่นแบบสะพายหลังสำหรับอัตราการใช้งาน Bti ที่ต้องการ ช่างเทคนิคแต่ละคนจะได้รับการฝึกอบรมให้ตรวจสอบด้วยสายตาและตั้งค่าหัวฉีดและรักษาแรงดันการสอบเทียบเสร็จสิ้นโดยการตรวจสอบว่ามีการใช้ Bti ในปริมาณที่ถูกต้องเท่าๆ กันต่อหน่วยพื้นที่รักษาแหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนทุกสองสัปดาห์กิจกรรมกำจัดลูกน้ำจะดำเนินการโดยได้รับการสนับสนุนจากผู้เชี่ยวชาญที่มีประสบการณ์และผ่านการฝึกอบรมมาเป็นอย่างดีสี่คนกิจกรรมกำจัดลูกน้ำและผู้เข้าร่วมได้รับการดูแลโดยหัวหน้างานที่มีประสบการณ์การรักษาตัวอ่อนเริ่มในเดือนมีนาคม 2562 ในช่วงฤดูแล้งในความเป็นจริง การศึกษาก่อนหน้านี้แสดงให้เห็นว่าฤดูแล้งเป็นช่วงเวลาที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการแทรกแซงตัวอ่อน เนื่องจากความมั่นคงของแหล่งเพาะพันธุ์และการลดลงของความอุดมสมบูรณ์ [27]การควบคุมลูกน้ำในช่วงฤดูแล้งคาดว่าจะป้องกันการดึงดูดของยุงในช่วงฤดูฝนBti สอง (02) กิโลกรัมซึ่งมีราคา 99.29 ดอลลาร์สหรัฐช่วยให้กลุ่มการศึกษาที่ได้รับการรักษาครอบคลุมทุกด้านในกลุ่ม LLIN+Bti การรักษาด้วยยาฆ่าแมลงกินเวลาหนึ่งปีเต็ม ตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 มีกรณีการรักษาตัวอ่อนทั้งหมด 22 กรณีในกลุ่ม LLIN + Bti
ผลข้างเคียงที่อาจเกิดขึ้น (เช่น อาการคัน เวียนศีรษะ หรือมีน้ำมูกไหล) ได้รับการตรวจสอบผ่านการสำรวจแต่ละครั้งโดยใช้เครื่องพ่นยาฆ่าแมลงชนิดไบโอลาร์วิไซด์ Bti และผู้อยู่อาศัยในครัวเรือนที่เข้าร่วมในกลุ่ม LIN + Bti
การสำรวจครัวเรือนได้ดำเนินการใน 400 ครัวเรือน (200 ครัวเรือนต่อกลุ่มการศึกษา) เพื่อประเมินเปอร์เซ็นต์ของการใช้ LLIN ในประชากรในการสำรวจครัวเรือนจะใช้วิธีแบบสอบถามเชิงปริมาณความชุกของการใช้ LLIN แบ่งออกเป็น 3 กลุ่มอายุ: 15 ปีแบบสอบถามเสร็จสมบูรณ์และอธิบายเป็นภาษา Senoufo ท้องถิ่นให้หัวหน้าครัวเรือนหรือผู้ใหญ่คนอื่นที่มีอายุมากกว่า 18 ปีฟัง
ขนาดขั้นต่ำของครัวเรือนที่สำรวจคำนวณโดยใช้สูตรที่อธิบายโดยวอห์นและมอร์โรว์ [34]
n คือขนาดตัวอย่าง e คือส่วนต่างของข้อผิดพลาด t คือปัจจัยด้านความปลอดภัยที่ได้มาจากระดับความเชื่อมั่น และ p คือสัดส่วนของผู้ปกครองของประชากรที่มีคุณลักษณะที่กำหนดแต่ละองค์ประกอบของเศษส่วนมีค่าคงที่ ดังนั้น (t) = 1.96;ขนาดครัวเรือนขั้นต่ำในสถานการณ์นี้ในการสำรวจคือ 384 ครัวเรือน
ก่อนการทดลองในปัจจุบัน มีการระบุ สุ่มตัวอย่าง อธิบาย อ้างอิงทางภูมิศาสตร์ และติดป้ายกำกับประเภทที่อยู่อาศัยที่แตกต่างกันสำหรับตัวอ่อนของยุงก้นปล่องในกลุ่ม LLIN+Bti และ LLINใช้เทปวัดเพื่อวัดขนาดของอาณานิคมที่ทำรังจากนั้นประเมินความหนาแน่นของลูกน้ำยุงทุกเดือนเป็นเวลา 12 เดือน ณ แหล่งเพาะพันธุ์ที่ได้รับการสุ่มเลือก 30 แห่งต่อหมู่บ้าน รวมทั้งหมด 60 แหล่งเพาะพันธุ์ต่อกลุ่มการศึกษามีการสุ่มตัวอย่างตัวอ่อน 12 ตัวต่อพื้นที่ศึกษา ซึ่งสอดคล้องกับการบำบัดด้วย Bti 22 ครั้งวัตถุประสงค์ของการเลือกแหล่งเพาะพันธุ์ 30 แห่งต่อหมู่บ้านคือเพื่อจับแหล่งรวบรวมตัวอ่อนทั่วหมู่บ้านและหน่วยการศึกษาในจำนวนที่เพียงพอเพื่อลดอคติเก็บตัวอ่อนโดยการจุ่มด้วยช้อนขนาด 60 มล. [35]เนื่องจากสถานรับเลี้ยงเด็กบางแห่งมีขนาดเล็กและตื้นมาก จึงจำเป็นต้องใช้ถังขนาดเล็กนอกเหนือจากถังมาตรฐานของ WHO (350 มล.)มีการดำน้ำทั้งหมด 5, 10 หรือ 20 ครั้งจากแหล่งวางไข่ที่มีเส้นรอบวง 10 เมตร ตามลำดับการระบุลักษณะทางสัณฐานวิทยาของตัวอ่อนที่เก็บรวบรวม (เช่น ยุงก้นปล่อง ยุงลาย และยุงลาย) ดำเนินการโดยตรงในสนาม [36]ตัวอ่อนที่เก็บรวบรวมได้แบ่งออกเป็นสองประเภทตามระยะการพัฒนา: ตัวอ่อนระยะเริ่มต้น (ระยะที่ 1 และ 2) และตัวอ่อนระยะระยะสุดท้าย (ระยะที่ 3 และ 4) [37]ตัวอ่อนจะถูกนับตามจำพวกและในแต่ละระยะการพัฒนาหลังจากการนับ ลูกน้ำยุงจะถูกนำกลับไปยังพื้นที่เพาะพันธุ์ และเติมน้ำจากแหล่งที่เสริมด้วยน้ำฝนในปริมาณเดิม
พื้นที่เพาะพันธุ์จะถือว่าเป็นบวกหากมีตัวอ่อนหรือดักแด้ของยุงสายพันธุ์ใดๆ อย่างน้อยหนึ่งตัวความหนาแน่นของตัวอ่อนถูกกำหนดโดยการหารจำนวนตัวอ่อนในสกุลเดียวกันด้วยจำนวนการดำน้ำ
การศึกษาแต่ละครั้งใช้เวลาสองวันติดต่อกัน และทุกๆ สองเดือน จะมีการรวบรวมยุงตัวเต็มวัยจาก 10 ครัวเรือนโดยสุ่มเลือกจากแต่ละหมู่บ้านตลอดการศึกษา ทีมวิจัยแต่ละทีมได้ทำการสำรวจตัวอย่างจาก 20 ครัวเรือนเป็นเวลาสามวันติดต่อกันจับยุงโดยใช้กับดักหน้าต่างมาตรฐาน (WT) และกับดักสเปรย์ไพรีทรัม (PSC) [38, 39]ในตอนแรกบ้านทุกหลังในแต่ละหมู่บ้านจะถูกนับจากนั้นสุ่มเลือกบ้านสี่หลังในแต่ละหมู่บ้านเป็นจุดรวบรวมยุงตัวเต็มวัยในบ้านแต่ละหลังที่ได้รับการสุ่มเลือก ยุงจะถูกเก็บจากห้องนอนหลักห้องนอนที่เลือกมีประตูและหน้าต่าง และถูกครอบครองเมื่อคืนก่อนห้องนอนยังคงปิดก่อนเริ่มงานและระหว่างเก็บยุง เพื่อป้องกันไม่ให้ยุงบินออกจากห้องมีการติดตั้ง WT ในแต่ละหน้าต่างของห้องนอนแต่ละห้องเพื่อเป็นจุดเก็บตัวอย่างยุงวันรุ่งขึ้นมีการเก็บยุงที่เข้ามาในที่ทำงานจากห้องนอนระหว่างเวลา 06.00 – 08.00 น.เก็บยุงจากพื้นที่ทำงานของคุณโดยใช้ปากเป่า และเก็บไว้ในถ้วยกระดาษแบบใช้แล้วทิ้งที่ปิดด้วยชิ้นเนื้อดิบมุ้งกันยุง.ยุงที่อยู่ในห้องนอนเดียวกันจะถูกจับทันทีหลังจากการรวบรวม WT โดยใช้ PSC ที่ใช้ไพรีทรอยด์หลังจากปูผ้าปูที่นอนสีขาวบนพื้นห้องนอนแล้ว ให้ปิดประตูและหน้าต่างแล้วพ่นยาฆ่าแมลง (สารออกฤทธิ์: ทรานส์ฟลูทริน 0.25% + เพอร์เมทริน 0.20%)หลังจากฉีดพ่นประมาณ 10 ถึง 15 นาที ให้นำผ้าคลุมเตียงออกจากห้องนอนที่ทำการรักษา ใช้แหนบคีบยุงที่เกาะบนผ้าปูที่นอนสีขาว และเก็บไว้ในจานเพาะเชื้อที่ใส่สำลีชุบน้ำไว้จำนวนผู้ที่เข้าพักทั้งคืนในห้องนอนที่เลือกก็ถูกบันทึกไว้เช่นกันยุงที่รวบรวมได้จะถูกถ่ายโอนไปยังห้องปฏิบัติการในสถานที่อย่างรวดเร็วเพื่อดำเนินการต่อไป
ในห้องปฏิบัติการ ยุงที่เก็บรวบรวมทั้งหมดได้รับการจำแนกตามสัณฐานวิทยาตามประเภทและสปีชีส์ [36]รังไข่ของแอนนาgambiae SL ใช้กล้องจุลทรรศน์ส่องกล้องส่องทางไกลพร้อมหยดน้ำกลั่นวางบนกระจกสไลด์ [35]สถานะความเท่าเทียมกันได้รับการประเมินเพื่อแยกสตรีหลายคู่ออกจากสตรีตั้งครรภ์โดยพิจารณาจากสัณฐานวิทยาของรังไข่และหลอดลม ตลอดจนเพื่อกำหนดอัตราการเจริญพันธุ์และอายุทางสรีรวิทยา [35]
ดัชนีสัมพัทธ์ถูกกำหนดโดยการทดสอบแหล่งที่มาของเลือดป่นที่เก็บมาใหม่แกมเบียโดย enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) โดยใช้เลือดจากคน ปศุสัตว์ (โค แกะ แพะ) และโฮสต์ไก่ [40]การรบกวนกีฏวิทยา (EIR) คำนวณโดยใช้ Anการประมาณการของผู้หญิง SL ในแกมเบีย [41] นอกจากนี้ An.การติดเชื้อ Plasmodium gambiae ถูกกำหนดโดยการวิเคราะห์ศีรษะและหน้าอกของตัวเมียหลายช่องโดยใช้วิธี circumsporozoite antigen ELISA (CSP ELISA) [40]ในที่สุดก็มีสมาชิกแอนระบุแกมเบียได้โดยการวิเคราะห์ขา ปีก และหน้าท้องโดยใช้เทคนิคปฏิกิริยาลูกโซ่โพลีเมอเรส (PCR) [34]
ข้อมูลทางคลินิกเกี่ยวกับโรคมาลาเรียได้มาจากทะเบียนการให้คำปรึกษาทางคลินิกของศูนย์สุขภาพ Napyeledugou ซึ่งครอบคลุมทั้งสี่หมู่บ้านที่รวมอยู่ในการศึกษานี้ (เช่น Kakologo, Kolekaha, Lofinekaha และ Nambatiurkaha)การตรวจสอบรายการทะเบียนมุ่งเน้นไปที่บันทึกตั้งแต่เดือนมีนาคม 2018 ถึงกุมภาพันธ์ 2019 และตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ข้อมูลทางคลินิกตั้งแต่เดือนมีนาคม 2018 ถึงกุมภาพันธ์ 2019 แสดงถึงข้อมูลพื้นฐานหรือก่อน Bti ในขณะที่ข้อมูลทางคลินิกตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 แสดงถึงข้อมูลก่อน Bti ข้อมูลการแทรกแซงข้อมูลหลังการแทรกแซง Btiข้อมูลทางคลินิก อายุ และหมู่บ้านของผู้ป่วยแต่ละรายในกลุ่มการศึกษา LLIN+Bti และ LLIN ได้รับการเก็บรวบรวมในทะเบียนสุขภาพสำหรับผู้ป่วยแต่ละราย ข้อมูลต่างๆ เช่น แหล่งกำเนิดของหมู่บ้าน อายุ การวินิจฉัยโรค และพยาธิวิทยาจะถูกบันทึกไว้ในกรณีที่ทบทวนในการศึกษานี้ มาลาเรียได้รับการยืนยันโดยการทดสอบการวินิจฉัยอย่างรวดเร็ว (RDT) และ/หรือกล้องจุลทรรศน์มาลาเรีย หลังจากให้การบำบัดแบบผสมผสานที่ใช้อาร์เทมิซินิน (ACT) โดยผู้ให้บริการด้านสุขภาพผู้ป่วยโรคมาลาเรียแบ่งออกเป็นสามกลุ่มอายุ (เช่น 15 ปี)อุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียต่อปีต่อประชากร 1,000 คนประเมินโดยการหารความชุกของโรคมาลาเรียต่อประชากร 1,000 คนด้วยประชากรในหมู่บ้าน
ข้อมูลที่รวบรวมในการศึกษานี้ถูกป้อนสองครั้งในฐานข้อมูล Microsoft Excel จากนั้นนำเข้าสู่ซอฟต์แวร์โอเพ่นซอร์ส R [42] เวอร์ชัน 3.6.3 สำหรับการวิเคราะห์ทางสถิติแพ็คเกจ ggplot2 ใช้ในการวาดแปลงแบบจำลองเชิงเส้นทั่วไปที่ใช้การถดถอยแบบปัวซองถูกนำมาใช้เพื่อเปรียบเทียบความหนาแน่นของตัวอ่อนและจำนวนยุงกัดเฉลี่ยต่อคนต่อคืนระหว่างกลุ่มการศึกษาการวัดอัตราส่วนความเกี่ยวข้อง (RR) ใช้เพื่อเปรียบเทียบความหนาแน่นของตัวอ่อนและอัตราการกัดของยุงคูเล็กซ์และยุงก้นปล่องGambia SL ถูกวางไว้ระหว่างกลุ่มการศึกษาสองกลุ่มโดยใช้กลุ่ม LLIN + Bti เป็นพื้นฐานขนาดผลถูกแสดงเป็นอัตราต่อรองและช่วงความเชื่อมั่น 95% (95% CI)อัตราส่วน (RR) ของการทดสอบปัวซองใช้เพื่อเปรียบเทียบสัดส่วนและอัตราอุบัติการณ์ของโรคมาลาเรียก่อนและหลังการแทรกแซงด้วย Bti ในแต่ละกลุ่มการศึกษาระดับนัยสำคัญที่ใช้คือ 5%
ระเบียบวิธีการศึกษาได้รับการอนุมัติโดยคณะกรรมการจริยธรรมการวิจัยแห่งชาติของกระทรวงสาธารณสุขและสาธารณสุขของประเทศโกตดิวัวร์ (N/Ref: 001//MSHP/CNESVS-kp) รวมถึงจากเขตสุขภาพระดับภูมิภาคและฝ่ายบริหาร ของคอร์โฮโกก่อนที่จะเก็บลูกน้ำยุงลายและตัวเต็มวัย ต้องได้รับความยินยอมที่มีการลงนามจากผู้เข้าร่วมการสำรวจครัวเรือน เจ้าของ และ/หรือผู้อยู่อาศัยข้อมูลครอบครัวและข้อมูลทางคลินิกจะไม่เปิดเผยตัวตนและเป็นความลับ และเข้าถึงได้เฉพาะผู้ตรวจสอบที่ได้รับมอบหมายเท่านั้น
มีการเยี่ยมชมสถานที่ทำรังทั้งหมด 1,198 แห่งจากแหล่งรังเหล่านี้ที่สำรวจในพื้นที่ศึกษา 52.5% (n = 629) อยู่ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 47.5% (n = 569) อยู่ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น (RR = 1.10 [95% CI 0 .98–1.24) ], พ = 0.088)โดยทั่วไป แหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนในท้องถิ่นจำแนกได้เป็น 12 ประเภท โดยแหล่งที่อยู่อาศัยของตัวอ่อนมีสัดส่วนมากที่สุดคือนาข้าว (24.5%, n=294) รองลงมาคือการระบายน้ำจากพายุ (21.0%, n=252) และเครื่องปั้นดินเผา (8.3)%, n = 99), ริมฝั่งแม่น้ำ (8.2%, n = 100), แอ่งน้ำ (7.2%, n = 86), แอ่งน้ำ (7.0%, n = 84), ปั๊มน้ำหมู่บ้าน (6.8 %, n = 81), ภาพพิมพ์กีบ (4.8%, n = 58), หนองน้ำ (4.0%, n = 48), เหยือก (5.2%, n = 62), บ่อ (1.9%, n = 23) และบ่อน้ำ (0.9%, n = 11) .-
โดยรวมแล้ว มีการรวบรวมลูกน้ำยุงทั้งหมด 47,274 ตัวจากพื้นที่ศึกษา โดยมีสัดส่วน 14.4% (n = 6,796) ในกลุ่ม LLIN + Bti เทียบกับ 85.6% (n = 40,478) ในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว ( (RR = 5.96) [95% CI 5.80–6.11], P ≤ 0.001)ตัวอ่อนเหล่านี้ประกอบด้วยยุงสามสกุล โดยชนิดที่โดดเด่นคือยุงก้นปล่อง(48.7%, n = 23,041) รองลงมาคือ Culex spp.(35.0%, n = 16,562) และยุงลาย(4.9%, n = 2340)ดักแด้ประกอบด้วยแมลงวันที่ยังไม่เจริญเต็มที่ร้อยละ 11.3 (n = 5344)
ความหนาแน่นเฉลี่ยโดยรวมของยุงก้นปล่อง spp.ตัวอ่อนในการศึกษานี้ จำนวนตัวอ่อนต่อช้อนตวงคือ 0.61 [95% CI 0.41–0.81] L/dip ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 3.97 [95% CI 3.56–4.38] L /dive ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น (ไม่บังคับ)ไฟล์ 1: รูปที่ S1)ความหนาแน่นเฉลี่ยของยุงก้นปล่อง spp.กลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวสูงกว่ากลุ่ม LLIN + Bti 6.5 เท่า (HR = 6.49; 95% CI 5.80–7.27; P <0.001)ไม่พบยุงก้นปล่องในระหว่างการรักษารวบรวมตัวอ่อนในกลุ่ม LLIN + Bti เริ่มตั้งแต่เดือนมกราคม ซึ่งสอดคล้องกับการรักษา Bti ครั้งที่ยี่สิบในกลุ่ม LLIN + Bti มีการลดลงอย่างมีนัยสำคัญในความหนาแน่นของตัวอ่อนระยะต้นและปลาย
ก่อนเริ่มการรักษาด้วย Bti (เดือนมีนาคม) ความหนาแน่นเฉลี่ยของยุงก้นปล่องในระยะเริ่มแรกอยู่ที่ประมาณ 1.28 [95% CI 0.22–2.35] L/dive ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 1.37 [95% CI 0.36– 2.36] l/ดำน้ำในกลุ่ม LLIN + Btiลิตร/จุ่ม/จุ่มเฉพาะแขน LLIN (รูปที่ 2A)หลังจากใช้การรักษาด้วย Bti ความหนาแน่นเฉลี่ยของยุงก้นปล่องในยุคแรกในกลุ่ม LLIN + Bti โดยทั่วไปจะค่อยๆ ลดลงจาก 0.90 [95% CI 0.19–1.61] เป็น 0.10 [95% CI – 0.03–0.18] l/dipความหนาแน่นของตัวอ่อนยุงก้นปล่องในระยะเริ่มแรกยังคงต่ำในกลุ่ม LLIN + Btiในกลุ่มเฉพาะ LLIN เท่านั้น ความผันผวนของความอุดมสมบูรณ์ของยุงก้นปล่อง spp.สังเกตตัวอ่อนระยะเริ่มต้นด้วยความหนาแน่นเฉลี่ยตั้งแต่ 0.23 [95% CI 0.07–0.54] L/dive ถึง 2.37 [95% CI 1.77–2.98] L/diveโดยรวมแล้ว ความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องในยุคแรกในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวนั้นสูงกว่าทางสถิติที่ 1.90 [95% CI 1.70–2.10] L/dive ในขณะที่ความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องในยุคแรกในกลุ่ม LLIN คือ 0.38 [95% CI 0.28 –0.47]) ลิตร/การจุ่ม+ กลุ่มบีทีไอ (RR = 5.04; 95% CI 4.36–5.85; P < 0.001)
การเปลี่ยนแปลงความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องมุ้งระยะต้น (A) และระยะปลาย (B) ในกลุ่มศึกษาตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ในภูมิภาคเนเปียร์ ทางตอนเหนือของโกตดิวัวร์LLIN: ตาข่ายฆ่าแมลงที่มีอายุการใช้งานยาวนาน Bti: Bacillus thuringiensis, อิสราเอล TRT: การรักษา;
ความหนาแน่นเฉลี่ยของยุงก้นปล่อง spp.ตัวอ่อนอายุปลายในกลุ่ม LLIN + Btiความหนาแน่นของ Bti ก่อนการบำบัดคือ 2.98 [95% CI 0.26–5.60] L/dip ในขณะที่ความหนาแน่นในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวคือ 1.46 [95% CI 0.26–2.65] l/วัน หลังจากการใช้ Bti ความหนาแน่นของ ตัวอ่อนของยุงก้นปล่อง instar ในกลุ่ม LLIN + Bti ลดลงจาก 0.22 [95% CI 0.04–0.40] เป็น 0.03 [95% CI 0.00–0.06] L/dip (รูปที่ 2B)ในกลุ่มที่ใช้ LLIN เพียงอย่างเดียว ความหนาแน่นของตัวอ่อนยุงก้นปล่องตอนปลายเพิ่มขึ้นจาก 0.35 [95% CI - 0.15-0.76] เป็น 2.77 [95% CI 1.13-4.40] ลิตร/การดำน้ำ โดยความหนาแน่นของตัวอ่อนจะแปรผันขึ้นอยู่กับวันที่สุ่มตัวอย่างความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อนยุงก้นปล่องระยะสุดท้ายในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวคือ 2.07 [95% CI 1.84–2.29] L/dive สูงกว่า 0.23 ถึงเก้าเท่า [95% CI 0.11–036] ลิตร/การแช่ใน LLIN+ กลุ่มบีทีไอ (RR = 8.80; 95% CI 7.40–10.57; P < 0.001)
ความหนาแน่นเฉลี่ยของ Culex spp.ค่าคือ 0.33 [95% CI 0.21–0.45] L/dip ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 2.67 [95% CI 2.23–3.10] L/dip ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น (ไฟล์เพิ่มเติม 2: รูปที่ S2)ความหนาแน่นเฉลี่ยของ Culex spp.กลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวสูงกว่ากลุ่ม LLIN + Bti อย่างมีนัยสำคัญ (HR = 8.00; 95% CI 6.90–9.34; P <0.001)
ความหนาแน่นเฉลี่ยของสกุล Culex Culex spp.ก่อนการรักษา Bti l/dip อยู่ที่ 1.26 [95% CI 0.10–2.42] l/dip ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 1.28 [95% CI 0.37–2.36] ในกลุ่ม LLIN เดียว (รูปที่ 3A)หลังจากใช้การรักษาด้วย Bti ความหนาแน่นของตัวอ่อน Culex ระยะแรกลดลงจาก 0.07 [95% CI - 0.001–0.] เป็น 0.25 [95% CI 0.006–0.51] L/dipไม่มีการรวบรวมตัวอ่อน Culex จากแหล่งอาศัยของตัวอ่อนที่ได้รับการรักษาด้วย Bti เริ่มตั้งแต่เดือนธันวาคมความหนาแน่นของตัวอ่อน Culex ในระยะแรกลดลงเหลือ 0.21 [95% CI 0.14–0.28] L/dip ในกลุ่ม LLIN + Bti แต่สูงกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวที่ 1.30 [95% CI 1.10– 1.50] l/immersionดรอป/วันความหนาแน่นของตัวอ่อน Culex ต้นในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวนั้นสูงกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti 6 เท่า (RR = 6.17; 95% CI 5.11–7.52; P <0.001)
การเปลี่ยนแปลงความหนาแน่นเฉลี่ยของ Culex spp.ตัวอ่อนการทดลองชีวิตในวัยเด็ก (A) และชีวิตในวัยเด็ก (B) ในกลุ่มการศึกษาตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ในภูมิภาค Napier ทางตอนเหนือของโกตดิวัวร์LLIN ตาข่ายฆ่าแมลงที่ติดทนนาน, Bti Bacillus thuringiensis Israel, Trt treatment
ก่อนการรักษาด้วย Bti ความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อนระยะสุดท้ายในกลุ่ม LLIN + Bti และกลุ่ม LLIN คือ 0.97 [95% CI 0.09–1.85] และ 1.60 [95% CI – 0.16–3.37] ลิตร/การแช่ตามลำดับ (รูปที่. 3B) ).ความหนาแน่นเฉลี่ยของสายพันธุ์ Culex ระยะสุดท้ายหลังเริ่มการรักษาด้วย Btiความหนาแน่นในกลุ่ม LLIN + Bti ค่อยๆ ลดลงและต่ำกว่าความหนาแน่นในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว ซึ่งยังคงสูงมากความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อน Culex ระยะสุดท้ายคือ 0.12 [95% CI 0.07–0.15] L/dive ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 1.36 [95% CI 1.11–1.61] L/dive ในกลุ่ม LLIN เท่านั้นความหนาแน่นเฉลี่ยของตัวอ่อน Culex ช่วงปลายนั้นสูงกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวอย่างมีนัยสำคัญมากกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti (RR = 11.19; 95% CI 8.83–14.43; P <0.001)
ก่อนการรักษาด้วย Bti ความหนาแน่นเฉลี่ยของดักแด้ต่อเต่าทองคือ 0.59 [95% CI 0.24–0.94] ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 0.38 [95% CI 0.13–0.63] ใน LLIN เท่านั้น (รูปที่ 4)ความหนาแน่นของนักเรียนโดยรวมคือ 0.10 [95% CI 0.06–0.14] ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 0.84 [95% CI 0.75–0.92] ในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวการรักษาด้วย Bti ลดความหนาแน่นเฉลี่ยของดักแด้ในกลุ่ม LLIN + Bti อย่างมีนัยสำคัญเมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (OR = 8.30; 95% CI 6.37–11.02; P <0.001)ในกลุ่ม LLIN + Bti ไม่มีการเก็บดักแด้หลังจากเดือนพฤศจิกายน
การเปลี่ยนแปลงความหนาแน่นเฉลี่ยของดักแด้การศึกษานี้ดำเนินการตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ในภูมิภาค Napier ทางตอนเหนือของโกตดิวัวร์LLIN ตาข่ายฆ่าแมลงที่ติดทนนาน, Bti Bacillus thuringiensis Israel, Trt treatment
เก็บยุงตัวเต็มวัยจำนวน 3,456 ตัวจากพื้นที่ศึกษายุงอยู่ใน 17 สายพันธุ์ 5 สกุล (ยุงก้นปล่อง, ยุงลาย, ยุงลาย, เอเรตมาโพไดต์) (ตารางที่ 1)ในพาหะนำโรคมาลาเรียgambiae sl เป็นพันธุ์ที่มีมากที่สุดโดยมีสัดส่วนร้อยละ 74.9 (n = 2587) รองลงมาคือ An.แกมเบีย เอสแอลfunestus (2.5%, n = 86) และค่าว่าง (0.7%, n = 24)ความมั่งคั่งของแอนนาgambiae sl ในกลุ่ม LLIN + Bti (10.9%, n = 375) ต่ำกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (64%, n = 2212)ไม่มีความสงบสุขบุคคล nli ถูกจัดกลุ่มด้วย LLIN เท่านั้นอย่างไรก็ตาม อัน.แกมเบียและอันfunestus มีอยู่ในทั้งกลุ่ม LLIN + Bti และกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว
ในการศึกษาที่เริ่มต้นก่อนการใช้ Bti ที่แหล่งเพาะพันธุ์ (3 เดือน) จำนวนยุงออกหากินเวลากลางคืนโดยรวมต่อคน (b/p/n) ในกลุ่ม LLIN + Bti คาดว่าจะอยู่ที่ 0.83 [95% CI 0.50–1.17 ] ในขณะที่ในกลุ่ม LLIN + Bti อยู่ที่ 0.72 ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น [95% CI 0.41–1.02] (รูปที่ 5)ในกลุ่ม LLIN + Bti ความเสียหายของยุง Culex ลดลงและยังคงอยู่ในระดับต่ำ แม้จะมีจุดสูงสุดที่ 1.95 [95% CI 1.35–2.54] bpp ในเดือนกันยายนหลังจากการใช้ Bti ครั้งที่ 12อย่างไรก็ตาม ในกลุ่มที่ใช้ LLIN อย่างเดียว อัตรายุงกัดเฉลี่ยจะค่อยๆ เพิ่มขึ้นก่อนที่จะถึงจุดสูงสุดในเดือนกันยายนที่ 11.33 [95% CI 7.15–15.50] bp/nอุบัติการณ์โดยรวมของยุงกัดลดลงอย่างมีนัยสำคัญในกลุ่ม LLIN + Bti เมื่อเทียบกับกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว ณ เวลาใดก็ได้ในระหว่างการศึกษา (HR = 3.66; 95% CI 3.01–4.49; P < 0.001)
อัตราการกัดของยุงในพื้นที่ศึกษาของภูมิภาคเนเปียร์ทางตอนเหนือของโกตดิวัวร์ตั้งแต่เดือนมีนาคม 2562 ถึงกุมภาพันธ์ 2563 LLIN ตาข่ายฆ่าแมลงที่ติดทนนาน, Bti Bacillus thuringiensis อิสราเอล, การรักษา Trt, กัด b/p/คืน/มนุษย์/ กลางคืน
ยุงก้นปล่อง gambiae เป็นพาหะนำโรคมาลาเรียที่พบบ่อยที่สุดในพื้นที่ศึกษาความเร็วในการกัดของอันที่พื้นฐาน ผู้หญิงแกมเบียมีค่า b/p/n 0.64 [95% CI 0.27–1.00] ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 0.74 [95% CI 0.30–1.17] ในกลุ่มเท่านั้น LLIN (รูปที่ 6) .ในช่วงระยะเวลาการแทรกแซงของ Bti กิจกรรมการกัดสูงสุดถูกพบในเดือนกันยายน ซึ่งสอดคล้องกับหลักสูตรที่สิบสองของการรักษาด้วย Bti โดยมีจุดสูงสุดที่ 1.46 [95% CI 0.87–2.05] b/p/n ในกลุ่ม LLIN + Bti และ จุดสูงสุดของ 9 .65 [95% CI 0.87–2.05] w/n 5.23–14.07] กลุ่ม LLIN เท่านั้นความเร็วกัดโดยรวมของอันอัตราการติดเชื้อในแกมเบียต่ำกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti อย่างมีนัยสำคัญ (0.59 [95% CI 0.43–0.75] b/p/n) มากกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (2.97 [95% CI 2, 02–3.93] b /พี/ไม่ใช่)(RR = 3.66; 95% CI 3.01–4.49; P < 0.001)
ความเร็วในการกัดของแอนนาgambiae sl หน่วยวิจัยในภูมิภาคเนเปียร์ ทางตอนเหนือของโกตดิวัวร์ ตั้งแต่เดือนมีนาคม 2019 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 มุ้งคลุมเตียงที่เคลือบด้วยยาฆ่าแมลงด้วย LLIN, Bti Bacillus thuringiensis อิสราเอล, การบำบัดแบบ Trt, กัด b/p/คืน/ คน/คืน
รวม 646 แอมป์แกมเบียถูกแยกส่วนโดยรวมแล้วร้อยละของความมั่นคงในพื้นที่อัตราความเท่าเทียมกันในแกมเบียโดยทั่วไปอยู่ที่ >70% ตลอดระยะเวลาการศึกษา ยกเว้นเดือนกรกฎาคม เมื่อมีการใช้เฉพาะกลุ่ม LLIN เท่านั้น (ไฟล์เพิ่มเติม 3: รูปที่ S3)อย่างไรก็ตาม อัตราการเจริญพันธุ์โดยเฉลี่ยในพื้นที่ศึกษาอยู่ที่ 74.5% (n = 481)ในกลุ่ม LLIN+Bti อัตราความเท่าเทียมกันยังคงอยู่ในระดับสูง โดยสูงกว่า 80% ยกเว้นเดือนกันยายน ซึ่งอัตราความเท่าเทียมกันลดลงเหลือ 77.5%อย่างไรก็ตาม ความแปรผันของอัตราการเจริญพันธุ์เฉลี่ยถูกพบในกลุ่มที่ใช้ LLIN เพียงอย่างเดียว โดยอัตราการเจริญพันธุ์เฉลี่ยต่ำสุดโดยประมาณคือ 64.5%
จากปี 389 แอน.การศึกษาหน่วยโลหิตแต่ละหน่วยจากแกมเบียพบว่า 80.5% (n = 313) มีต้นกำเนิดจากมนุษย์ ผู้หญิง 6.2% (n = 24) กินเลือดผสม (มนุษย์และครัวเรือน) และ 5.1% (n = 20) กินเลือด .อาหารจากปศุสัตว์ (โค แกะ และแพะ) และตัวอย่างที่วิเคราะห์ 8.2% (n = 32) มีผลเสียต่อเลือดป่นในกลุ่ม LLIN + Bti สัดส่วนของผู้หญิงที่ได้รับเลือดมนุษย์คือ 25.7% (n = 100) เทียบกับ 54.8% (n = 213) ในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (ไฟล์เพิ่มเติม 5: ตาราง S5)
รวม 308 แอมป์P. gambiae ได้รับการทดสอบเพื่อระบุสมาชิกของสายพันธุ์ที่ซับซ้อนและการติดเชื้อ P. falciparum (ไฟล์เพิ่มเติม 4: ตารางที่ S4)“สายพันธุ์ที่เกี่ยวข้อง” สองชนิดอยู่ร่วมกันในพื้นที่ศึกษา ได้แก่ Angambiae ss (95.1%, n = 293) และ Anโคลุซซี่ (4.9%, n = 15)ยุงก้นปล่อง gambiae ss ในกลุ่ม LLIN + Bti ต่ำกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียวอย่างมีนัยสำคัญ (66.2%, n = 204) (RR = 2.29 [95% CI 1.78–2.97], P < 0.001)ยุงก้นปล่องพบสัดส่วนใกล้เคียงกันในกลุ่ม LLIN + Bti (3.6%, n = 11) และกลุ่มเฉพาะ LLIN เท่านั้น (1.3%, n = 4) (RR = 2.75 [95% CI 0.81–11 .84] พ = .118)ความชุกของการติดเชื้อพลาสโมเดียม ฟัลซิพารัมในกลุ่ม AnSL ในแกมเบียอยู่ที่ 11.4% (n = 35)อัตราการติดเชื้อพลาสโมเดียม ฟัลซิพารัมอัตราการติดเชื้อในแกมเบียต่ำกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti อย่างมีนัยสำคัญ (2.9%, n = 9) มากกว่าในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (8.4%, n = 26) (RR = 2.89 [95% CI 1. 31–7.01 ], พ = 0.006)-เมื่อเปรียบเทียบกับยุงก้นปล่อง ยุงก้นปล่องแกมเบียมีสัดส่วนการติดเชื้อพลาสโมเดียมสูงสุดที่ 94.3% (n=32)coluzzii เพียง 5.7% (n = 5) (RR = 6.4 [95% CI 2.47–21.04], P < 0.001)
โดยสำรวจประชาชนจำนวน 2,435 คน จาก 400 ครัวเรือนความหนาแน่นเฉลี่ย 6.1 คนต่อครัวเรือนอัตราการเป็นเจ้าของมุ้งในครัวเรือนคือ 85% (n = 340) เทียบกับ 15% (n = 60) สำหรับครัวเรือนที่ไม่มีมุ้ง (RR = 5.67 [95% CI 4.29–7.59], P < 0.001) ( ไฟล์เพิ่มเติม 5 : ตาราง S5)-การใช้ LLIN คือ 40.7% (n = 990) ในกลุ่ม LLIN + Bti เทียบกับ 36.2% (n = 882) ในกลุ่ม LLIN เพียงอย่างเดียว (RR = 1.12 [95% CI 1.02–1.23 ], P = 0.013)อัตราการใช้ประโยชน์สุทธิโดยรวมโดยเฉลี่ยในพื้นที่ศึกษาคือ 38.4% (n = 1842)สัดส่วนของเด็กอายุต่ำกว่า 5 ปีที่ใช้อินเทอร์เน็ตมีความคล้ายคลึงกันในทั้งสองกลุ่มการศึกษา โดยมีอัตราการใช้งานสุทธิ 41.2% (n = 195) ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 43.2% (n = 186) ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น(HR = 1.05 [95% CI 0.85–1.29], P = 0.682)ในกลุ่มเด็กอายุ 5 ถึง 15 ปี ไม่มีความแตกต่างในอัตราการใช้สุทธิระหว่าง 36.3% (n = 250) ในกลุ่ม LLIN + Bti และ 36.9% (n = 250) ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น (RR = 1. 02 [ CI 95% 1.02–1.23], P = 0.894)อย่างไรก็ตาม ผู้ที่มีอายุมากกว่า 15 ปีใช้มุ้ง 42.7% (n = 554) บ่อยน้อยกว่าในกลุ่ม LLIN + Bti มากกว่า 33.4% (n = 439) ในกลุ่ม LLIN เท่านั้น (RR = 1.26 [95% CI 1.11–1.43) ], ป <0.001)
มีการบันทึกผู้ป่วยทางคลินิกทั้งหมด 2,484 รายที่ Napier Health Center ระหว่างเดือนมีนาคม 2018 ถึงกุมภาพันธ์ 2020 ความชุกของโรคมาลาเรียทางคลินิกในประชากรทั่วไปอยู่ที่ 82.0% ของผู้ป่วยทั้งหมดที่มีพยาธิวิทยาทางคลินิก (n = 2038)อัตราการเกิดมาลาเรียในท้องถิ่นต่อปีในพื้นที่ศึกษานี้คือ 479.8‰ และ 297.5‰ ก่อนและหลังการรักษาด้วย Bti (ตารางที่ 2)


เวลาโพสต์: Jul-01-2024